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一、研究背景

乙型流感病毒（Flu B）是一種極具傳染性的呼吸道病原體，每年會引發(fā)大量感染和死亡病例，尤其在冬季高發(fā)，還可能導致腦炎、細菌性肺炎等嚴重并發(fā)癥。目前，雖有疫苗和抗病毒藥物，但 Flu B 的抗原變異使其效果受限，因此急需快速準確的診斷方法。

傳統(tǒng)的 Flu B 診斷方法，如病毒分離、抗原檢測和血清學檢測，耗時較長，無法滿足快速診斷的需求。近年來，基于 PCR 的分子診斷方法廣泛應用，但存在依賴昂貴設備、需要專業(yè)技術人員操作以及反應時間長等缺點。等溫擴增技術，像環(huán)介導等溫擴增（LAMP）和重組酶聚合酶擴增（RPA），能在恒溫下進行，無需特殊熱循環(huán)設備和大量消耗試劑，不過非特異性擴增產(chǎn)物會影響其特異性.

二、材料與方法

RPA 引物設計與篩選：從 NCBI 數(shù)據(jù)庫下載 Flu B 核酸序列，根據(jù)特定保守區(qū)域設計 3 條正向（F1 - F3）和 3 條反向（R1 - R3）RPA 引物，由生工生物合成。用購買的 Flu B 假病毒產(chǎn)品提取的 RNA 作模板，將引物兩兩組合，用商業(yè)試劑盒進行 RPA 擴增，擴增條件為 38°C 孵育 30 分鐘，1000 copies / 測試 RNA 模板。通過瓊脂糖凝膠電泳檢測擴增產(chǎn)物質量，篩選最佳引物組合。

crRNA 設計與篩選：根據(jù)選定引物序列，設計 6 條 Cas12a crRNA（crRNA1 - crRNA6），由商業(yè)試劑盒合成。在一鍋法 Flu B 檢測系統(tǒng)中評估篩選，選擇檢測效率最高的 crRNA 用于后續(xù)實驗。 

一鍋法 RT - RPA - CRISPR/Cas12a 系統(tǒng)條件優(yōu)化：一鍋法 Flu B 檢測系統(tǒng)包括 RT - RPA 擴增和 CRISPR/Cas12a 檢測兩部分。RT - RPA 反應總體積 24μL，含特定濃度引物、RNA 模板、激活劑和無核酸酶水，在 38°C 反應 30 分鐘。CRISPR/Cas12a 檢測系統(tǒng)總體積 10μL，含特定緩沖液、Lb5Cas12a、crRNA 和單鏈 DNA（ssDNA）報告探針，在不同溫度下孵育 10 分鐘，設置不同工作溫度、Cas12a 濃度、crRNA6 濃度和 ssDNA 探針類型進行優(yōu)化，收集熒光強度數(shù)據(jù)。

一步法 RT - RPA - CRISPR/Cas12a 系統(tǒng)條件優(yōu)化：一步法 Flu B 檢測系統(tǒng)總體積 25μL，包含多種試劑。設置不同工作溫度、Cas12a 濃度、crRNA6 濃度和 ssDNA 探針類型，在不同溫度下反應 45 分鐘，每分鐘收集熒光信號進行優(yōu)化。 

敏感性分析：構建含 Flu B 片段的重組質粒，稀釋為不同濃度（200 copies / 測試、100 copies / 測試、50 copies / 測試、25 copies / 測試），每個濃度進行 10 次重復反應。用 Sigmoid 函數(shù)根據(jù)陽性結果預測一步法檢測的最低檢測限（LOD）。

特異性檢測：收集 6 種干擾樣本（A 群鏈球菌（GAS）、鮑曼不動桿菌（AB）、人副流感病毒（HPIV）、肺炎支原體（MP）、肺炎克雷伯菌（KP）和 H1N1 禽流感病毒（H1N）），以 Flu B 假病毒核酸為陽性對照，無核酸酶水為陰性對照，用一步法 RT - RPA - CRISPR/Cas12a 檢測系統(tǒng)進行檢測，每個樣本重復 3 次。

臨床樣本驗證：淮北人民醫(yī)院提供 101 份咽拭子樣本，用商業(yè)試劑盒提取 RNA 作模板進行 RT - RPA 反應。同時用一鍋法和一步法 RT - RPA - CRISPR/Cas12a 方法檢測樣本，以 PCR 方法檢測結果為金標準，分析兩種方法與 PCR 方法的一致性。 

數(shù)據(jù)處理與統(tǒng)計分析：檢測結果用相對熒光倍數(shù)表示，每個樣本至少檢測 3 次生物學重復，數(shù)據(jù)以平均值 ± 標準差表示。用 GraphPad Prism 10 軟件進行統(tǒng)計分析，通過 Student’s t 檢驗評估統(tǒng)計學差異，用 Sigmoid 函數(shù)預測 LOD，P < 0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。 

三、研究結果

檢測系統(tǒng)工作流程：一鍋法 RT - RPA - CRISPR/Cas12a Flu B 檢測系統(tǒng)中，RT - RPA 反應在管底進行，CRISPR/Cas12a 檢測系統(tǒng)在管蓋準備。Flu B 靶序列經(jīng) RT - RPA 擴增后，通過短時間離心將 CRISPR/Cas12a 檢測系統(tǒng)混入 RT - RPA 反應體系，借助 FAM 標記的 ssDNA 探針釋放熒光信號，40 分鐘內可完成檢測。一步法 RT - RPA - CRISPR/Cas12a 系統(tǒng)將兩種檢測試劑整合在一個反應中，45 分鐘內完成反應并在熒光信號檢測儀上分析。

引物和 crRNA 篩選結果：通過瓊脂糖凝膠電泳評估 9 種引物組合的擴增產(chǎn)物，確定 F1/R2 為最佳引物組合。在一鍋法檢測系統(tǒng)中篩選 6 條 crRNA，發(fā)現(xiàn) crRNA6 檢測效率最高，因此選擇 crRNA6 用于后續(xù)實驗。

系統(tǒng)條件優(yōu)化結果：一鍋法系統(tǒng)中，確定 Cas12a 最佳工作溫度為 42°C，最佳濃度為 250nM，P8C 的 ssDNA FAM 標記探針性能最佳。一步法系統(tǒng)中，最佳反應溫度為 40°C，Cas12a 最佳濃度為 125nM。

敏感性和特異性檢測結果：一鍋法和一步法檢測系統(tǒng)對不同濃度重組質粒的檢測結果顯示，兩者檢測率相同，一步法檢測系統(tǒng)的 LOD 為 58 copies / 測試。特異性檢測中，只有陽性對照樣本產(chǎn)生明顯熒光信號，干擾樣本無明顯信號，表明一步法檢測系統(tǒng)對 Flu B 檢測特異性高，無交叉反應。

臨床樣本驗證結果：101 份臨床咽拭子樣本檢測結果顯示，一鍋法檢測系統(tǒng)敏感性為 81.25%，特異性為 98.82%，與 PCR 方法一致性為 96.03%；一步法檢測系統(tǒng)敏感性為 56.25%，特異性為 100%，與 PCR 方法一致性為 93.06%。

四、討論

本研究開發(fā)的一步法 Flu B 檢測系統(tǒng)，整合 RT - RPA 和 CRISPR/Cas12a 技術，能在 45 分鐘內特異性識別 Flu B，LOD 為 58 copies / 測試。與 PCR 方法相比，該系統(tǒng)特異性高（100%），總體一致性達 93.06%，有助于 Flu B 的早期診斷和精準治療。

目前基于 RT - RPA 的平臺雖能在 1 小時內篩查流感病毒和新冠病毒，敏感性可達 10 copies 病毒 RNA，但非特異性擴增產(chǎn)物導致的假陽性限制了其應用?；?RPA - CRISPR/Cas12a 的 Flu B 檢測方法敏感性雖高，但多為兩步法，需開蓋操作，增加氣溶膠污染風險，操作復雜，不利于臨床應用。本研究的一步法 RT - RPA - CRISPR/Cas12a 系統(tǒng)在單管內完成所有反應，無需開蓋，避免氣溶膠污染，成本降低 75%，主要通過減少反應體積和降低 Cas12a 濃度實現(xiàn)，同時抑制了 Cas12a 的順式切割活性。

與 PCR 相比，PCR 的高 Ct 值會導致 “灰色地帶” 問題，而本研究的一鍋法和一步法檢測系統(tǒng)在臨床樣本中特異性和一致性高，有效避免該問題。不過，一步法檢測系統(tǒng)在臨床樣本中的敏感性（56.25%）低于一鍋法（81.25%），可能與單一反應條件和臨床樣本中病毒載量低有關，且本研究臨床樣本數(shù)量有限，后續(xù)需擴大樣本量驗證。

此外，Cas12a 的順式切割活性影響一步法反應的敏感性，本研究通過優(yōu)化反應溫度和 Cas12a 濃度降低其影響。同時，其他技術如光控 crRNA 激活系統(tǒng)和基于水凝膠的檢測平臺等不斷發(fā)展，有望進一步提高一步法 RT - RPA - CRISPR/Cas12a 系統(tǒng)檢測 Flu B 及其他 RNA 病毒的性能。

綜上所述，本研究開發(fā)的一鍋、一步法 Flu B 檢測系統(tǒng)，操作簡便、快速準確、無污染，所有試劑可凍干預制備，為 Flu B 的即時診斷奠定基礎，也為一步法 CRISPR/Cas 系統(tǒng)在其他病原體分子診斷中的應用提供參考。

相關產(chǎn)品：RPA試劑盒及試紙條系列：

Cas酶系列